1.乙醇浸泡:在室溫下，將干粉浸泡于50-60%乙醇中至少24小時(shí)，并不斷攪拌以保證凝膠溶脹，用無(wú)鹽水洗去殘存的乙醇濾干;

　　2.無(wú)鹽水浸泡:室溫下，在無(wú)鹽水中充分溶脹24小時(shí)，間隙攪拌，以保證凝膠的*溶脹，然后;

　　3.鹽酸浸泡:在常溫下再用0.2NHCl浸泡12小時(shí)，間隙攪拌，濾干，水洗至中性;

　　4.將溶脹好的凝膠脫氣后(真空抽濾或超聲波)根據(jù)裝柱要求一次性置入柱內(nèi)，注意保持濕態(tài)裝柱，并避免柱內(nèi)產(chǎn)生氣泡或斷層;

　　5.上樣前平衡層析柱至少3-5個(gè)柱體積直到記錄儀基線(xiàn)變得平穩(wěn)為止(流出液的PH值等于上柱的Buffer的PH值);

　　6.凝膠過(guò)濾的上樣量一般為5%的柱床體積，我們建議初次上樣控制在1-2%的床體積，視分離情況可以調(diào)整;脫鹽時(shí)上樣量可以達(dá)到20%的柱床體積，柱高的選擇也與分離要求相關(guān)，柱高控制在40-50cm以下，過(guò)高的凝膠層會(huì)引起較大的反壓，應(yīng)當(dāng)盡可能避免。難分離物質(zhì)要有一定柱高和流速控制，脫鹽時(shí)高徑比為5:1即可;

　　7.洗脫方法:可以用無(wú)鹽水，也可以采用上柱時(shí)的緩沖液洗脫;在上柱Buffer中加入NaCl等梯度洗脫或鹽梯度洗脫也可以*分離純化;

　　8.在位清洗(CIP)凝膠使用十次后作一次CIP，目的是去除柱床內(nèi)沉淀的及頑固殘留的蛋白。方法是以40cm/h用1M氫氧化鈉反向洗四個(gè)柱體積，再以至少三個(gè)柱體積平衡緩沖液再生。